Misst Größe, Form und Fluoreszenzintensität einzelner Zellen über mehrere Marker hinweg.
Automatisierte, reproduzierbare und codefreie Analyse in der Cloud
Keine zu installierende Software, keine GPU erforderlich. Führen Sie Analysen von jedem Browser auf jedem Gerät aus.
Laden Sie Ihre Bilder hoch und erhalten Sie publikationsreife Ergebnisse. Keine Programmierung oder Skripterstellung erforderlich.
Jede Analyse wird protokolliert und ist reproduzierbar. Teilen Sie Protokolle sofort mit Ihren Mitarbeitern.
Cytely automatisiert die Bildanalyse, damit Sie sich auf die Wissenschaft konzentrieren können.
Zellkerne aus DAPI segmentieren
Optional zur ungefähren Zellgrenze erweitern oder einen zweiten Kanal für die Zellkörper-Segmentierung nutzen
Morphologische und Intensitätsmerkmale pro Zelle über alle Kanäle messen
Interaktiv mit 2D-Streudiagrammen erkunden und gaten.
Rein nukleäre Morphologie, Ganzzell-Morphologie (mit Zellkörperfärbung), mehrkanaliges Intensitätsprofiling (bis zu 4 Kanäle), Hellfeld-Zellsegmentierung, interaktives Populations-Gating zur Zelltyp-Klassifizierung, Zellspreitungsflächen-/Substratspreitungs-Assays (Phalloidin/F-Aktin), Thrombozyten-Spreitungsmorphometrie.
Texturmerkmale (Haralick), auf maschinellem Lernen basierende Phänotyp-Klassifikatoren, Zellform-Embeddings.
1 Abhängig von der Probenqualität
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Die meisten Forschenden nehmen Mikroskopiebilder auf und beschreiben dann mit Adjektiven, was sie sehen: Die Zellen wirken größer, sie scheinen nach der Behandlung runder zu sein. Sehen Sie die Analyse in Aktion: https://youtube.com/watch?v=3_ZQGB8qcyY
Zhang J, Simonsson C, Fawad A, Alsalim W, Vaag A, Neuhaus M, Stenkula KG. International Journal of Obesity
Mithilfe der datengesteuerten Mikroskopieplattform von Cytely charakterisierten die Forschenden Hunderte einzelner menschlicher Fettzellen und stellten fest, dass viele davon die Subtyp-Marker DDR2 und PLIN1 in hohem Maße koexprimieren, bei gleichbleibenden GLUT4-Werten – ein Beleg für distinkte Subtypen reifer Adipozyten und ein skalierbarer Weg, die zunächst durch Transkriptomik beschriebene Heterogenität auf Einzelzellebene zu validieren.
Die Analyse von Zellpopulationen im Vollblut ist eine grundlegende und zugleich anspruchsvolle Aufgabe. Selbst nach den üblichen Präparationsschritten enthalten Proben häufig gemischte Populationen aus Leukozyten, Thrombozyten und Erythrozyten (RBCs). Cytely ermöglicht es Forschenden, diese Populationen auf Einzelzellebene schnell zu identifizieren und zu quantifizieren. Über Scatter-Plots und intuitives Gating lassen sich verschiedene Blutzelltypen in einem unvoreingenommenen, interaktiven Workflow unterscheiden und charakterisieren. In dieser Application Note demonstrierte Kernfunktionen: Visualisierung der Heterogenität über eine gemischte Zellpopulation hinweg Identifizierung von Populationen (Neutrophile, Thrombozyten, RBCs) mithilfe von Scatter-Plots Gating zur Isolierung von Neutrophilen-Subpopulationen
Hunderte von Forschenden nutzen Cytely, um Entdeckungen zu beschleunigen
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Der datengetriebene Ansatz von Cytely ist ein Traum für erfahrene Mikroskopiker wie mich.
Das eliminiert jegliche Verzerrung vollständig. Der Preis ist verschwindend gering, wenn man bedenkt, wie viel Zeit die Bildanalyse sonst kostet.
Es ist einfach erstaunlich, was heute möglich ist! Cytely nimmt mir die ganze Arbeit ab!
Mit Cytely bin ich zehnmal schneller. Es spart bei jedem Experiment Stunden.
Die Erkenntnisse, die wir dank Cytely gewonnen haben, waren eine absolut transformative Erfahrung. Sie ermöglichten es uns, unser Experiment neu zu konzipieren und das Projekt endlich voranzubringen.
Cytely hat unsere Zeitpläne drastisch verkürzt und zugleich die Zuverlässigkeit der Daten erhöht – durch automatisierte, unvoreingenommene Analysen und deutlich größere Stichproben.
Mit Cytely haben wir im Handumdrehen Tausende von Zellen analysiert und präzise bestimmt, welche transfiziert, infiziert oder beides waren. Was drei Jahre lang ein unüberwindbares Hindernis war, haben wir in unserer ersten Sitzung gelöst.
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